项目数量-9
放射性标记配体饱和检测
北检院检测中心 | 完成测试:次 | 2026-06-26
注意:因业务调整,暂不接受个人委托测试望见谅。
检测项目
受体密度测定:通过饱和曲线计算单位样本(如每毫克蛋白)中特定受体的最大结合位点数,即Bmax值。
平衡解离常数测定:量化配体与受体亲和力的关键参数,即达到半最大结合时所需游离配体的浓度(Kd值)。
非特异性结合评估:在过量未标记配体存在下,测定非受体介导的放射性配体结合量,用于校正总结合数据。
总结合量测定:在无竞争配体条件下,测量样本与放射性标记配体结合的总放射性计数。
特异性结合计算:通过从总结合量中减去非特异性结合量,获得真正由受体介导的特异性结合数据。
饱和曲线绘制:以游离配体浓度为横坐标,特异性结合量为纵坐标,绘制反映结合位点饱和过程的曲线。
Scatchard作图分析:将饱和结合数据线性化处理,用于直观估算Bmax和Kd,并验证结合是否为单一亲和力位点。
Hill系数计算:分析配体与受体结合的协同性,判断结合位点是否一致以及是否存在相互作用。
蛋白浓度定量:对实验所用膜蛋白或细胞裂解液样本进行蛋白浓度测定,用于标准化结合数据(如fmol/mg蛋白)。
受体活性验证:通过饱和实验确认所研究的受体是否具有功能性配体结合能力,为其药理特性研究提供基础。
检测范围
G蛋白偶联受体:广泛应用于肾上腺素能受体、多巴胺受体、阿片受体等众多GPCR家族的药理学表征。
离子通道受体:用于研究如GABAA受体、NMDA受体等配体门控离子通道的结合特性。
核激素受体:应用于雌激素受体、雄激素受体等细胞内受体的配体结合分析。
酶联受体:如生长因子受体酪氨酸激酶,可用于研究其与放射性标记生长因子的结合。
神经递质转运体:用于检测多巴胺转运体、血清素转运体等膜转运蛋白的密度和亲和力。
动物组织样本:常用于大鼠、小鼠等动物脑、心脏、肝脏等组织分浆或膜制备的受体分析。
培养细胞系:适用于表达内源性或外源性(转染)受体的各种贴壁或悬浮细胞。
人类病理标本:在科研中用于分析手术获取的人体组织样本,研究疾病状态下的受体变化。
血液细胞成分:可用于淋巴细胞、血小板等血细胞表面特定受体的定量研究。
亚细胞组分:对细胞膜组分、突触体、细胞核提取物等进行特定受体的定位和定量分析。
检测方法
样本制备:将组织或细胞匀浆,通过差速离心制备富含受体的细胞膜组分,并定量蛋白浓度。
反应体系建立:在含有恒定量膜蛋白的缓冲液中,加入递增浓度的放射性标记配体进行孵育。
非特异对照设置:平行设置一系列管,在加入放射性配体的同时加入高浓度(通常100-1000倍Kd)的未标记同种配体。
平衡孵育:将反应体系在特定温度(常为25°C或37°C)下孵育足够时间,确保结合反应达到平衡。
结合终止与分离:采用快速真空过滤法或离心法分离膜结合配体与游离配体,终止反应。
滤膜洗涤:使用预冷的缓冲液快速洗涤滤膜数次,以去除非特异性滞留的游离放射性配体。
放射性测量:将滤膜或沉淀物干燥后,放入闪烁瓶,加入闪烁液,用液体闪烁计数器测量放射性计数(CPM或DPM)。
数据收集与校正:记录总结合管和非特异管的计数,计算各浓度点的特异性结合量。
曲线拟合分析:使用非线性回归软件(如GraphPad Prism)将特异性结合数据拟合至单一位点饱和结合模型。
结果报告:最终报告受体的Bmax值(密度)、Kd值(亲和力)以及相关的统计学参数和曲线图。
检测仪器设备
液体闪烁计数器:核心设备,用于精确测量滤膜或样品中放射性同位素(如³H, ¹²⁵I)的衰变计数。
真空抽滤装置:通常由真空泵、多头过滤歧管和收集器组成,用于快速分离结合与游离的配体。
玻璃纤维滤膜:用于捕获膜蛋白和结合的放射性配体,具有高蛋白结合力和低非特异性吸附特性。
恒温振荡水浴槽或孵育箱:为结合反应提供精确且均匀的温度控制及温和振荡,确保反应平衡。
高速离心机与超速离心机:用于制备细胞膜样本,通过不同转速离心分离亚细胞组分。
组织匀浆器:包括玻璃-特氟龙匀浆器或超声破碎仪,用于破碎组织或细胞以释放膜组分。
精密移液器与多通道移液器:用于精确加样,特别是构建包含多个浓度梯度的反应体系。
蛋白浓度测定仪:如分光光度计或专用蛋白分析仪,用于Bradford或BCA法测定样本蛋白浓度。
数据分析软件:如GraphPad Prism, SigmaPlot等,内置非线性回归模块,用于饱和曲线的拟合和参数计算。
γ计数器(针对¹²⁵I):当使用碘-125等γ射线同位素标记配体时,需使用γ计数器而非液体闪烁计数器进行测量。
检测流程
线上咨询或者拨打咨询电话;
获取样品信息和检测项目;
支付检测费用并签署委托书;
开展实验,获取相关数据资料;
出具检测报告。
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