病毒载量检测

北检院检测中心  |  完成测试:  |  2025-07-01  

病毒载量检测通过定量分析样本中的病毒核酸拷贝数,评估感染进程和治疗效果。核心检测要点包括核酸提取效率、PCR扩增特异性、标准曲线线性范围(R²≥0.99)、检测下限(LoD≤50 copies/mL)及室内质控品回收率(85%~115%),严格执行防污染措施确保数据准确性。

注意:因业务调整,暂不接受个人委托测试望见谅。

检测项目

病毒核酸定量:采用TaqMan探针法,检测范围10²~10⁹ copies/mL,RSD≤5%

检测限值验证:通过梯度稀释确定最低检出限,LoD≤20 IU/mL

动态范围验证:验证标准曲线线性范围,R²≥0.998

密度分析:批内CV≤5%,批间CV≤8%

特异性验证:确保与近源病毒无交叉反应,特异性≥99%

抑制物检测:内参基因Ct值偏移≤1.5循环

样本稳定性:评估不同保存温度下(-80℃/4℃/室温)72h内降解率≤10%

提取效率验证:加标回收率≥90%

引物探针验证:熔解曲线分析Tm值偏差≤1℃

扩增效率评估:标准曲线斜率-3.6~-3.1,对应效率90%~110%

室内质控:包含弱阳性(2~3倍LoD)、中值、阴性对照

交叉污染监控:每批次设置阴性样本≥10%

检测范围

临床样本:血清/血浆样本采用EDTA抗凝管采集,检测限≤50 copies/mL

呼吸道样本:鼻咽拭子保存于病毒运输液(VTM),采样量≥1mL

脑脊液样本:无菌采集0.5mL,需离心去除细胞碎片

组织活检样本:石蜡包埋组织需脱蜡处理,新鲜组织采用液氮研磨

细胞培养上清:接种后72h内取样,避免反复冻融

环境样本:物体表面采样面积10×10cm²,使用无菌拭子湿润采样

污水样本:采用PEG浓缩法,浓缩倍数≥100倍

血液制品:血浆制品检测需DNase预处理去除游离DNA

疫苗原液:添加Triton X-100裂解病毒包膜

实验动物样本:小鼠肺组织匀浆采用0.5mm研磨珠处理

冷冻干燥样本:复溶液体积与原始体积误差≤5%

法医样本:陈旧样本需增加扩增循环数至45 cycles

检测标准

ISO 15189:2022《医学实验室质量和能力要求》

ISO/IEC 17025:2017《检测和校准实验室能力通用要求》

WS/T 683-2020《新型冠状病毒核酸检测标准》

YY/T 1596-2017《甲型流感病毒核酸检测试剂盒》

EP17-A2《临床检验方法检出能力评价》

GB/T 37871-2019《核酸检测试剂盒质量评价技术规范》

GB 19489-2008《实验室生物安全通用要求》

CLSI EP05-A3《定量测量程序的精密度性能评价》

CLSI EP12-A2《定性检测性能评价》

FDA《病毒载量检测试剂性能验证指南》

YY/T 1223-2014《血浆(清)总RNA提取试剂盒》

PCR实验室建设规范WS 233-2017

检测仪器

实时荧光定量PCR仪:配置5通道光学系统,温控精度±0.2℃,支持多重靶标检测

全自动核酸提取仪:磁珠法通量1~96样本/批次,提取效率≥95%

超微量分光光度计:检测范围2~7500 ng/μL,分辨率0.2 ng/μL

生物安全柜:A2型二级防护,进风风速0.53 m/s±10%

超低温冷冻离心机:最大转速15000 rpm,温控范围-20℃~40℃

梯度PCR仪:温度均一性±0.5℃,升降温速率≥4℃/秒

微滴式数字PCR系统:分区数20000个/样本,绝对定量精度±10%

自动化液体处理工作站:移液精度CV≤1.5%,支持96/384孔板操作

恒温金属浴:控温范围30~100℃,温度波动±0.5℃

电化学发光免疫分析仪:检测灵敏度0.1 pg/mL,动态范围6个数量级

纳米孔测序仪:单次运行产出30 Gb,读长>10 kb

冷冻研磨仪:震荡频率0~70 Hz,适配2 mL离心管

检测流程

线上咨询或者拨打咨询电话;

获取样品信息和检测项目;

支付检测费用并签署委托书;

开展实验,获取相关数据资料;

出具检测报告。

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